转换到繁體中文
您的位置 : 首页 > 报刊

黄连多糖含量测定及抗氧化活性研究
作者:吴玉娟, 王懿萍, 姜延伟,姜怡    
作者单位:西南交通大学药学院,四川 峨眉 614202

《时珍国医国药》 2008年 第8期

  多个检索词,请用空格间隔。
       【摘要】 
       目的比较3种pH值条件下提取的黄连多糖的含量及抗氧化活性差异。方法采用蒽酮-硫酸法测量黄连多糖的含量。分别测定黄连多糖对·OH,O2-·,DPPH的抗氧化活性。结果黄连药材中多糖含量为:碱提取多糖>水提取多糖>酸提取多糖。抗氧化研究结果表明,在pH值中性条件下,水提取多糖经木瓜酶与Sevag法除蛋白得到的多糖在抗氧化实验中显示出较好的效果,对·OH的EC50为83.913 μg/ml,对DPPH的EC50为249.856 μg/ml,对O2-·则无明显的抑制作用。结论黄连多糖可作为抗氧化剂,具有较好的清除自由基的作用。
       【关键词】  黄连 多糖 含量测定 抗氧化活性
       Determination and Antioxidant Activity Analysis of Coptis Chinensis Polysaccharide
       WU Yujuan,WANG Yiping,JIANG Yanwei,JIANG Yi
       (College of Pharmacology,Southwest Jiaotong University,Emei 614202,China)
       Abstract:ObjectiveTo compare the differences of content and antioxidant activity of Coptis chinensis polysaccharides between three pH levels rate.MethodsAnthrone-sulphuric acid method was adopted to survey the content of polysaccharide in Coptis chinensis.Inhibition rate of ·OH, O2-· and DPPH was used to detect its antioxidant activity.ResultsThe content order of polysaccharide in Coptis chinensis was:polysaccharide extracted with base liquor>polysaccharide extracted with water>polysaccharide extracted with acid liquor.The antioxidant activity experiment showed that PSA3 extracted with water and deproteined with papain and Sevag method had better effect. EC50 of PSA3 against·OH was 83.913μg/ml,and against DPPH was 249.856μg/ml.But PSA3 had no effect against O2-·.ConclusionCoptis chinensis has free radical scavenging activity and can be used as a antioxidant.
       Key words:Coptis chinensis;  Polysaccharide;  Assaying;  Antioxidant activity
       
       黄连为毛茛科植物黄连Coptis chinensis Franch.,三角叶黄连C. deltoidea C. Y. Cheng et Hsiao或云连C. teeta Wall.的干燥根茎,是清热燥湿、泻火解毒的良药[1],最早记载于东汉《神农本草经》,并列于上品。目前,国内外对黄连有效成分的研究大多集中于其生物碱,尤以小檗碱的研究为多,未发现对黄连多糖的研究。本文对比研究3种pH值条件下提取的黄连多糖的含量及体外抗氧化活性差异,为充分开发利用黄连资源及新药研发提供依据。
       1  材料与仪器
       1.1  材料
       黄连,产地峨眉,采收于2006年冬至前后,经生药学教授王盛民鉴定为4年生味连。DPPH,英国Alfa,95%;其余试剂均为国产分析纯。实验提取及分析用水为超纯水(18.23 M·cm-1)。
       1.2  仪器
       TU1901紫外-可见分光光度计,北京普析;FA1004-53423电子天平(0.0001g),上海精科;TDL-5-A低速大容量离心机,上海安亭;DZF-6030B真空干燥箱,上海齐欣。KL-UP超纯水器,成都优普;PHS-3C型pH计,上海雷磁;JJ-1A60W数显电动搅拌器,江苏富华。
       2  方法
       2.1  样品制备
       2.1.1  提取
       称取粉碎至20目的黄连粗粉3份,每份60 g,分别置于索氏提取器中用5倍无水乙醇回流脱脂6h。滤渣挥干后,分别加入10倍水、10倍0.1 mol/L NaOH溶液、10倍0.1 mol/L HCl溶液,80℃水浴回流提取1 h。提取液调pH值至中性,抽滤,各旋蒸浓缩至300 ml。
       2.1.2  除蛋白
       每份提取液等分3份,各100 ml,按表1方法除蛋白。见表1。表1  除蛋白方法(略)
       2.1.3  醇沉
       经表1方法处理后的9份提取液以5 000 r/min离心5 min,取上清液用0.22μm微孔滤膜抽滤,将95%乙醇缓慢加入滤液中,边加边搅拌,调醇浓度至80%,在冰箱中4℃静置12 h后取出。将醇沉液以5 000 r/min离心5 min,倾弃上清液。在得到的沉淀中再各加80%乙醇50 ml,搅拌并超声5 min后以5 000 r/min离心5 min,倾弃上清液,重复此步操作至上清液无色(5~8)次。再用无水乙醇重复上步操作3次,真空干燥后即得灰白色粉末状的黄连多糖。
       2.2  含量测定
       参照2005版《中国药典》,采用蒽酮-硫酸法[2]测定多糖含量。经波长扫描,在624 nm处有最大吸收。
       2.2.1  蒽酮试剂配制
       称取0.400 0 g蒽酮,加6ml无水乙醇助溶,再加75%硫酸200 ml,摇匀,置棕色瓶中备用。
       2.2.2  标准葡萄糖溶液的配制
       称取105℃干燥至恒重的无水葡萄糖0.050 0 g,配制200 μg/ml葡萄糖溶液250 ml。分别吸取5,10,15,20,25,30 ml于50 ml容量瓶中,定容后作为葡萄糖标准溶液。
       2.2.3  标准曲线的制备
       在具塞试管中依次加入不同浓度的标准葡萄糖溶液2 ml和蒽酮试剂8 ml,摇匀,沸水浴20 min,冷却至室温后,在624 nm处测定其吸光度。以吸光度为纵坐标,质量浓度为横坐标,绘制标准曲线。
       2.2.4  含量测定
       样品在60℃干燥至恒重,配制为100 μg/ml供试液,按标准曲线制备项下方法测定吸光度值,多糖含量=(C×V×D)/W,生药含量=多糖含量×M/20。式中C为测得的样品溶液的葡萄糖质量浓度(μg/ml),D为样品溶液的稀释倍数,V为供试液体积(ml),W为供试品的质量(mg),M为醇沉后得到的多糖的质量(g)。
       2.3   抗氧化活性研究
       2.3.1  黄连多糖对·OH的抑制作用
       原理:采用Fenton体系[3]测定黄连多糖对·OH的抑制作用。·OH由EDTA-Fe-H2O2产生,由于·OH可特异性地使番红花红T褪色,根据褪色程度可以衡量·OH生成量。经波长扫描,反应体系在554 nm处有最大吸收。
       
       方法:在具塞试管中依次加入100 μg/ml番红花红T 2 ml,0.2mol/L pH7.4的PBS 2 ml,100 μg/ml供试液2 ml,0.3%H2O2 2 ml,0.15 mmol/L EDTA-Fe2+2  ml,混匀后37℃水浴30 min。抑制率(E)=(A样品-AEmin)/(AEmax-AEmin),式中Emin为以水代替供试液,Emax为以水代替供试液和EDTA-Fe2+。
       2.3.2  黄连多糖对 O2-·的抑制作用
       原理:邻苯三酚在碱性条件下能迅速自氧化,释放出超氧阴离子,生成的中间产物在紫外区有吸收[4]。经波长扫描,在320 nm处有最大吸收。经时间扫描,该反应在4  min后趋于平缓。
       方法:在具塞试管中依次加入100μg/ml供试液4 ml,0.05 mol/L pH8.2的Tris-HCl 4ml,37℃水浴预热10 min,再加入4 mN-1 mN邻苯三酚-盐酸溶液1 ml,混匀后在37℃水浴中以跑表计时准确反应4 min,立即用6 mol/L HCl 1ml终止反应。抑制率(E) =(AEmax-A样品)/ (AEmax-AEmin),式中Emin为以水代替供试液、Tris-HCl,Emax为以水代替供试液。
       2.3.3  黄连多糖对DPPH的清除作用
       原理:DPPH(2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl)是一种带有不配对电子的比较稳定的自由基,其N原子上有一个游离电子。DPPH的40%乙醇-水溶液在526 nm处有最大的吸收峰。加入抗氧化剂后,DPPH捕捉一个电子与游离电子配对,在526 nm处的吸收减弱[5,6]。
       
       方法:在棕色容量瓶中加入100μg/ml供试液6 ml,60μg/ml DPPH醇溶液4 ml中,混匀后在室温下反应30 min。对DPPH自由基的清除率(E)= (AEmax-A样品)/AEmax,式中Emax为以水代替供试液。
       3  结果与结论
       3.1  结果
       3.1.1  标准曲线的制备及含量测定 通过蒽酮-硫酸法测得实验结果(见表2),标准曲线方程为Y = 0.006 9X + 0.000 4,r2=0.999 7,线性范围:15.07~131.01μg/ml。表2  黄连多糖纯度及含量测定结果(略)
       3.1.2  黄连多糖对·OH的抑制作用
       实验结果表明,9种多糖水溶液对·OH的生成均有较强的抑制作用,见图1。
       以不同浓度的PSA3作量效关系实验(见表3)。采用SPSS 13.0软件作概率单位回归(Probit Analysis)分析,以吸光度为纵坐标,质量浓度为横坐标,经概率对数变换(probability-logarithmic transformation)[7],将S型量效曲线变换为线性回归方程:PROBIT=-2.359 6+1.226 5X(13 iterations,χ2=6.188,P=0.402,拟合良好),EC50为83.913μg/ml(95%置信区间为69.782~101.320)。实验以甘露醇作对照品,EC50为1.625 mg/ml。表3  PSA3对·OH的抑制作用(略)
       3.1.3  黄连多糖对O2-.的抑制作用
       实验结果表明,酸提多糖溶液对O2-·的生成有一定的抑制作用,见图2。
       以PSC1作量效关系实验,结果见表4,经概率对数变换得回归方程:PROBIT=-4.668 9+2.024 3X(15 iterations,χ2=11.026,P=0.088,拟合良好),EC50为202.473μg/ml(95%置信区间为161.744~255.182)。实验以Vc作对照品,EC50为29.545 μg/ml。表4  PSC1对O2-.的抑制作用(略)
       3.1.4  黄连多糖对DPPH的清除作用
       实验结果表明,9种多糖水溶液对DPPH自由基均有较强的清除作用,见图3。
       以PSA3作量效关系实验,结果见表5,经概率对数变换得回归方程:PROBIT=-3.819 8+1.580 1X(14 iterations,χ2=18.942,P=0.004,拟合良好),EC50为249.856 μg/ml(95%置信区间为177.312~380.469)。实验以Ve作对照品,EC50为7.296 mg/ml。表5  PSA3对DPPH自由基的清除作用(略)
       3.2  结论蒽酮-硫酸法测得3种不同pH值条件下提取的多糖含量为:碱提取多糖>水提取多糖>酸提取多糖。
       
       木瓜酶与Sevag法结合除蛋白效果明显优于单用Sevag法除蛋白,得到的黄连多糖的纯度更高。
       黄连多糖抗氧化研究结果表明,9种多糖水溶液均有一定抗氧化作用。其中PSA3显示出较好的效果,对·OH的EC50为83.913 μg/ml,明显优于对照品甘露醇,对DPPH的EC50为249.856 μg/ml优于对照品Ve。而对碱性条件下邻苯三酚产生的O2-·则无明显的抑制作用。综上,黄连多糖可作为抗氧化剂,具有较好的清除自由基的作用。
       【参考文献】
           [1]王强.中药分析[M].北京:中国医药科技出版社,2005:306.
       
       [2]国家药典委员会.中国药典,Ⅰ部[S].北京:化学工业出版社,2005:215,附录ⅤA.
       
       [3]Stéphane Caillet,Hanling Yu.Fenton reaction applied for screening natural antioxidants[J].Food Chemistry, 2007, 100(2):542.
       
       [4]许伸鸿,杭 瑚,李运平.超氧化物歧化酶邻苯三酚测活法的研究与改进[J].化学通报,2001,64(8): 516.
       
       [5]Aquino R,Morelli S,Lauro MR,et al Phenolic constituents and antioxidant activity of an extract of Anthurium versicolor leaves[J].J Nat Prod,2001,64:1019.
       
       [6]P.N. Okusa, O. Penge,et al.Direct and indirect antimicrobial effects and antioxidant activity of Cordia gilletii De Wild[J].Journal of Ethnopharmacology, 2007,112(3): 476.
       
       [7]杜荣骞.生物统计学,第2版[M].北京:高等教育出版社,2003:166.

经典中医古籍

中药学教材(附图片)

穴位数据库(附图片)