转换到繁體中文
您的位置 : 首页 > 报刊

美洲大蠊提取物对实验性肝纤维化的影响
作者:李武,段丽芳,何贵清,沈志强,杨海秋,梁燕萍    
作者单位:1.昆明医学院附属第一医院;云南 昆明 650032; 2.云南省天然药物重点实验室,云南 昆明 650031

《时珍国医国药》 2010年 第5期

  多个检索词,请用空格间隔。
       【摘要】 
       目的探讨美洲大蠊提取物对四氯化碳(CCl4)所致实验性肝纤维化的影响。方法采用CCl4复制小鼠肝纤维化模型,同时用0.25 g/kg的美洲大蠊提取物灌胃治疗,测定血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天门冬氨酸氨基转移酶(AST)、白蛋白(ALB)、透明质酸(HA),Ⅲ型前胶原(PC-Ⅲ), IV型胶原(IV-C),层粘蛋白(LN),并以光镜现察肝脏组织学改变,进行炎症活动度分级及肝纤维化分期。结果美洲大蠊提取物有降低ALT,AST的作用,并显能著降低HA,LN,PCⅢ和Ⅳ-C。经治疗后的肝胜细胞变性、坏死及纤维组织增生明显减少。结论美洲大蠊提取物具有抗实验性肝纤维化的作用。
       【关键词】  美洲大蠊提取物; 肝纤维化; 四氯化碳; 小鼠
          昆虫作为一类新的医药资源宝库,越来越受到国内外学者的重视。近年研究表明,美洲大蠊提取物(Abstract of Periplaneta americana,APA)对实验性肝损伤有较好的保护作用,能抑制雏鸭体内鸭乙型肝炎病毒的复制[1]。但对肝纤维化是否有作用,目前未见报道。为探讨APA对肝纤维化的防治效果,本研究用CCl4复制小鼠肝纤维化模型,初步观察APA对肝纤维化影响。
       1  材料与方法
       1.1  动物健康雄性昆明种小鼠40只,胎龄3~4周,体质量18~22 g,由昆明医学院动物科提供,实验过程中饲养条件相同,而且定期清洁,消毒。
       1.2  试剂CCl4,分析纯,由天津化学试剂三厂生产,批号:080618。橄榄油,化学纯,由上海国药集团化学试剂有限公司提供,批号: F20080219。透明质酸(HA)、层粘蛋白(LN)、Ⅲ型前胶原(PC-Ⅲ)、IV型胶原(Ⅳ-C)、 肝纤维化放免试剂盒由北京北方生物技术研究所提供,批号:081020。Masson试剂盒由福州迈新生物有限公司提供,批号:811048003。
       1.3  主要药物APA原药,为昆明赛诺制药有限公司提供,批号:03122001。用蒸馏水配制成浓度为1.25 %的混悬液。临用时用力摇匀。动物用量均按生药量计算。秋水仙碱(购自云南植物药业有限公司,批号:20080401)1 mg溶于100 ml蒸馏水中,冰箱保存备用。
       2  方法
       2.1  动物模型的制备20%CCl4橄榄油溶液按0.05 ml/10 g体质量给小鼠颈背部皮下注射,2次/周,连续6周。
       2.2  动物分组40只小鼠随机分成4组,10只/组,即正常对照组、模型组、APA治疗组、秋水仙碱对照组。正常对照组动物仅皮下注射橄榄油溶液;模型组和药物实验组动物皮下注射20%CCl4橄榄油溶液(0.05 ml/10 g体质量),2次/周, 连续6周。造模当日即开始灌胃给予药物或蒸馏水,1次/d,连续6周,直至动物处死:空白对照组及模型组动物按0.2 ml/10 g体质量灌胃蒸馏水;秋水仙碱组:按0.1 ml/10g体重灌胃,用量为0.1 mg/kg;APA治疗组:给1.25%原药0.2 ml/10g体质量灌胃(0.25 g/kg,相当于临床60kg成人每日用量的25倍)。
       2.3  观测指标与标本采集实验过程中观察动物的体质量、食欲、神态等一般状况。分别于实验开始后的第6周末剖杀动物,采集血液和肝脏标本。剖杀前24 h禁食不禁水,剖杀时先以乙醚吸入麻醉后摘眼球用毛细玻管眼眶取血供生化检测,再立即剖杀动物,取肝左叶中部、左叶及右上叶前部,进行组织病理检查。采用放免法(按试剂盒说明书进行)测定血清HA, LN,PC-Ⅲ,Ⅳ-C水平。采用全自动生化分析仪测定ALT,AST,TBiL和ALb。
       2.4  病理组织学检查肝组织行石蜡包埋,常规切片,HE及Masson染色,光镜下观察肝组织学改变及胶原纤维增生情况,按照《病毒性肝炎防治方案》的标准[2],进行炎症活动度分级及肝纤维化分期。有两期以上肝纤维化形成,即确定肝纤维化模型复制成功。
       2.5  统计方法采用SPSS13.0统计软件分析数据,实验所得数据用±s表示,组间两两比较采用q检验,等级资料用秩和检验。 α=0.05作为显著性检验标准。P< 0.05,结果有统计学意义。
       3  结果
       3.1  小鼠一般情况空白对照组处死前均存活,模型组实验中死亡1只,合计死亡1只。死亡者未列入统计。
       3.2  APA对实验性肝纤维化小鼠肝功能的影响APA治疗组及秋水仙碱组转氨酶的升高均明显低于模型组,且APA治疗组的降酶作用优于秋水仙碱组。模型组与药物组之间的ALB及TB无显著性差异见表1。表1  APA对实验性肝纤维化小鼠肝功能的影响(略)
       3.3  APA对实验小鼠肝纤维化指标的影响APA组及秋水仙碱组血清中的HA、LN、PCⅢ、Ⅳ-C均明显低于模型组(表2)。
       3.4  病理形态学表现肝组织切片HE染色观察,正常对照组肝小叶结构完整,无肝细胞变性、坏死,无炎细胞浸润及纤维组织增生(见图1)。模型组肝组织损害严重,肝小叶结构破坏,肝细胞明显肿胀、变性,其中多为脂肪变性,部分呈气球样变,肝小叶周围明显坏死,胶原增生显著,形成部分假小叶(见图2)。APA治疗组纤维增生较少,局限于汇管区,未出现假小叶的形成(见图3)。秋水仙碱组改善肝纤维化作用明显(见图4)。表2  APA对小鼠肝纤维化指标的影响(略)
        肝组织切片Masson染色观察,正常对照组小鼠肝小叶结构完整,肝索排列整齐,于管壁可偶见少量亮绿着色,提示正常肝组织仅极少量胶原组织沉积于中央静脉壁(见图5)。模型组小鼠肝脏体积缩小,颜色呈现暗红色,部分表面呈结节状,边缘较钝。
       Masson染色可见肝小叶结构破坏,肝细胞索排列紊乱,汇管区扩大增宽,且有肝细胞变性、坏死以及炎细胞浸润,纤维间隔广泛形成(见图6)。美洲大蠊提取物组和秋水仙碱组:肝小叶结构破坏程度、肝细胞变性坏死及炎细胞浸润程度较模型组轻。见图7~8。
       3.5  APA对小鼠肝纤维化分期(S)的影响经秩和检验,APA治疗组及秋水仙碱组与模型组小鼠的肝纤维化分期(S)的比较组间差异有统计学意义(P<0.01)。APA组和秋水仙碱组小鼠的S均明显较模型组轻(P<0.01)。见表3。表3  各组小鼠肝纤维化分期(略)
       4  讨论
        肝纤维化是多种慢性肝病的共同病理基础,所以,抗肝纤维化已经成为慢性肝病对因治疗之外的重要治疗环节[3]。肝纤维化实质是细胞外基质(extracellularmatrix,ECM)合成与代谢失衡,导致ECM异常沉积。ECM包括胶原、非胶原糖蛋白及蛋白多糖,其中胶原是最重要的ECM。肝脏胶原有Ⅰ,Ⅲ,Ⅳ,Ⅴ,Ⅵ型,以Ⅰ,Ⅲ型为主。其水平可反映肝纤维化的程度,并与病变程度呈正相关[4]。目前普遍认为,肝纤维化病理过程是可逆的[5]。在慢性病毒性肝炎病因治疗之同时,根据疾病发展的不同阶段,采取抗肝纤维化治疗不失为一种有效手段。近年来,关于抗肝纤维化的研究有不少报道,但目前疗效确切、不良反应少的抗纤维化西药很少,大多还处在实验研究阶段[2,6]。自20世纪70年代开始,国内外学者致力于中医药抗肝纤维化的研究,发现中药在抗肝纤维化治疗中具有明显的优势,包括单味药,复方的研究[6,7],但疗效均不肯定,且主要来源于植物或动物。而昆虫作为一类新的医药资源宝库,其药用价值值得深入研究。
        肝龙胶囊是利用现代工艺从美洲大蠊Periplaneta americana L.中提取的以黏糖氨酸为主要有效成分的APA制剂,由昆明赛诺制药有限公司生产。近年研究表明,APA对实验性肝损伤有较好的保护作用,能抑制雏鸭体内鸭乙型肝炎病毒的复制[1],并降低四氯化碳肝损伤小鼠血清SGPT值并减轻肝细胞损伤[8]。临床观察提示,APA可能具有抗HBV作用(李成芸等《中药“肝龙”胶囊治疗慢性乙肝近期疗效观察》第13次全国中西医结合肝病学术会议,2004)。
        本研究初步观察了美洲大蠊提取物对CCl4所致小鼠肝纤维化的影响,结果证实, APA能降低CCl4肝纤维化小鼠的血清转氨酶,还能明显降低HA,LN,CⅣ和PCⅢ水平,提示APA具有较好的抑制细胞外基质的合成,以及促进其降解的作用。通过病理肝纤维化程度分级分析可知, APA能明显改善受损肝脏的病理形态,降低纤维化程度。提示美洲大蠊提取物对CCl4所致小鼠肝纤维化具有一定的防治作用。
       【参考文献】
           [1]高永翔,扈晓宇,钟 森,等.蟑螂提取物抗肝损伤及抗病毒作用探讨[J].2006, 28(3):155.
       
       [2]Hepatic fibrosis study group of chinese liver diseases. Consensus on evaluation of the diagnosis and efficacy of hepatic fibrosis[J].Chinese J Hepatol, 2002, 10(5): 327.
       
       [3]Lamireau T, Desmouliere A, Bioulac-Sage P, et al. Mechanisms of hepatic fibrogenesis[J]. Arch Pediatr, 2002, 9:392.
       
       [4]LiC H,Piao DM,Xu WX,et al.Morphological and serum hyaluronic acid,laminin and type Ⅳ collagen changes in dimethylnitrosamine-induced hepatic fibrosis of rat.World J Gastroenterol,2005,11(48)∶7620.
       
       [5]雷力民,姜婷婷,林寿宁,等.肝纤维化的中药治疗作用机制研究[J].医学综述,2008,14(8):1242.
       
       [6]Mann D A , Smart D E. Transcriptional regulation of hepatic stellate cell activation[J].Gut, 2002, 50: 891.
       
       [7]Okazaki I, Watanabe T, Hozawa S, et al. Reversibility of hepatic fibrosis: from the first report of collagenase in the liver to the possibility of gene therapy for recovery[J]. Keio J Med,2001,50: 58.
       
       [8]杜一民,陈鸿珊,李树楠,等.治疗乙型肝炎新药肝龙胶囊的药效学初步研究[J].时珍国医国药,2006,17(8):1369.

经典中医古籍

中药学教材(附图片)

穴位数据库(附图片)