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降糖保肾汤对糖尿病大鼠肾脏的影响
作者:李美子1,郝营丽2,陈正爱2    
作者单位:(1.延边大学临床医学院,吉林 延吉 133000; 2.延边大学基础医学院,吉林 延吉 133000)

《时珍国医国药》 2010年 第8期

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       【摘要】 
       目的探讨降糖保肾汤(jiang tang bao shen decoction ,JTBSD)对糖尿病(diabetes mellitus, DM)大鼠肾脏的保护作用及其机制。方法采用单次腹腔注射链脲佐菌素(Streptozotocin,STZ)建立DM大鼠模型。大鼠随机分为4组:正常组、模型组、JTBSD组、盐酸贝那普利(Benazepril hydrochloride,BNPH)组。给药12周,收集24 h尿液测定尿肌酐,心脏采血检测各组大鼠血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)、血肌酐(serum creatinine,SCr),并计算肌酐清除率(creatinine clearancerate,CCr)水平,光镜下观察肾组织的病理改变,免疫组化观察肾组织转化生长因子β1(transforming growth factorβ1 ,TGF-β1)表达水平。结果JTBSD能明显降低DM大鼠的BUN、SCr、CCr水平,能够减轻DM大鼠肾组织系膜基质增生、肾小球硬化及血管水肿,并使DM大鼠肾组织中TGF-β1表达明显减少。结论JTBSD对DM大鼠肾脏具有保护作用。
       【关键词】  糖尿病; 肾病; 肾组织转化生长因子β1
       糖尿病的慢性并发症糖尿病肾病(diabetic nephropathy ,DN)已成为糖尿病最常见的并发症之一,而DN是导致糖尿病患者致死率及致残率升高的主要原因之一。DN其病理特征为肾小球基底膜增厚和肾小球系膜区细胞外基质的积聚,从而导致肾小球硬化,并出现肾功能衰竭等[1]。TGF-β是一种多向性、多效性和多功能的细胞因子,在DN进展中发挥着重要的作用,并介导肾脏病变。本实验采用单次腹腔注射STZ的方法建立糖尿病大鼠模型,研究降糖保肾汤对DM大鼠肾脏的保护作用及其机制。
       1 材料
       1.1 药物与试剂降糖保肾汤由延边大学临床医学院制提供;盐酸贝那普利为北京诺华制药有限公司产品;链脲佐菌素为美国Sigma公司产品;SABC试剂盒、DAB显色试剂盒和兔抗TGF-β1多克隆抗体均为武汉博士德生物工程有限公司产品。
       1.2 动物Wistar雄性大鼠,体质量150~200 g;由延边大学医学部实验动物科提供。
       2 方法与结果
       2.1 JTBSD对STZ所致DM大鼠BUN、SCr、CCr的影响随机法将80只大鼠分为两组:10只大鼠列为正常组,正常组腹腔注射枸橼酸缓冲液;另70只单次腹腔注射STZ 50 mg/kg(临用前用0.05 mol/L枸橼酸缓冲液溶解,pH为4.4, 4℃),注射STZ 72 h后,尾静脉采血测空腹血糖并同时测尿糖,血糖≥ 16.7mmol/L,尿糖“+++”以上者列入DM观察对象。再将造模成功的大鼠随机分为模型组(20只)、JTBSD组(15只)和BNPH组(15只)。造模7 d后,JTBSD组每天灌服JTBSD 30 g生药/kg体质量,BNPH组每天灌服BNPH 10 mg/kg体质量,正常组和模型组每日灌服等体积的蒸馏水,共12周。12周末,收集大鼠24 h尿液,记录尿量和检测尿素氮。之后,用3%水合氯醛10 ml/kg腹腔麻醉,心脏采血,测大鼠的BUN、SCr水平,并计算CCr。对4组数据用SPSS11.0软件进行单因素方差分析处理。结果见表1。表1 JTBSD对STZ所致DM大鼠BUN、SCr、CCr的影响
       2.2 JTBSD对STZ所致DM大鼠肾脏组织病理的影响 实验大鼠分组、造模及给药同“2.1”项方法。12周末,打开腹腔快速切除肾脏,左肾肾脏皮质立即置入10%中性福尔马林液固定,用于HE染色。结果见图1。图1 JTBSD对STZ所致DM大鼠肾脏组织病理的影响(HE染色100×)
       2.3 JTBSD对STZ所致DM大鼠肾脏细胞因子TGF-β1的影响实验大鼠分组、造模、给药同“2.1”项方法。12周末,打开腹腔快速切除肾脏,左肾肾脏皮质立即置入10%中性福尔马林液固定,用于免疫组化标本的制备。结果见图2。图2 JTBSD对STZ所致DM大鼠的肾脏细胞因子TGF-β1的影响(免疫组化染色,100×)
       3 讨论
       BUN和SCr都是机体蛋白质代谢产物,它们的浓度取决于氮的分解和肾的排泄功能,在摄入食物及体内分解代谢比较稳定的情况下,其浓度的多少取决于肾的排泄能力。因此,血清肌酐和尿素氮浓度在一定程度上可反映肾小球的滤过功能[2]。DN时,原有的肾脏功能遭到破坏, BUN、SCr和CCr上升,双肾滤过率逐渐下降。TGF-β是一种多向性、多效性和多功能的细胞因子。在哺乳动物中存在三种形式的TGF-β,分别为TGF-β1、TGF-β2、TGF-β3,其中TGF-β1所占比例最高(>90%),活性也最强,是起主要作用的TGF-β因子[3,4]。TGF-β与其受体(TβR)结合后,通过细胞膜上的Smad蛋白可将TGF-β信号从细胞表面传至细胞核内,从而调节靶基因的转录[5]。TGF-β1在DN进展中发挥着重要的作用,其介导肾脏病变的机制有如下几点:①TGF-β1刺激ECM积聚;②抑制细胞增殖、促进细胞肥大;③促进细胞凋亡;④改变细胞表型;⑤与其他细胞因子的相互作用。本实验表明JTBSD能明显降低DM大鼠的BUN、SCr、CCr,能够使DM大鼠肾组织系膜基质增生减轻、肾小球硬化明显减轻、血管水肿减轻,使DM大鼠肾组织中TGF-β1表达明显减少。JTBSD对DM大鼠肾脏具有明显的保护作用,其作用机制可能与防止肾脏功能改变、减轻大鼠肾脏组织病理改变、抑制肾脏细胞因子TGF-β1的表达有关。
       【参考文献】
          [1] Jckle-Meyer I, Szukics B, Neubauer K, et al.Extracellular matrix proteins as early markers in diabetic nephropathy[J]. Eur J Clin Chem Clin Biochem, 1995, 33(4):211.
       
       [2] 徐叔云,卞如濂,陈 修.药理实验方法学,第3版[M].北京:人民卫生出版社,2003:1220.
       
       [3] 冯文焕,高 鑫,叶 真,等. 尿TGF-β1、层粘连蛋白、Ⅳ型胶原与2型糖尿病肾病的关系[J].中华内分泌代谢杂志,2003,19(5):393.
       
       [4] Schnaper HW,Hayashida T,Hubchak SC,et al.TGF-beta signal transduction and mesangial cell fibrogenesis[J]. Am J physiol Renal physiol, 2003, 284(2):243.
       
       [5] Lawrence DA. Latent-TGF-beta:an overview[J]. Mol Cell Biochem,2001, 219(1): 163.

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