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       【摘要】 
       目的考察膨化炮制对红参有效成分人参皂苷的影响。方法运用膨化技术对红参进行膨化炮制，并与传统炮制品进行外观性状、TLC鉴别、含量测定比对实验。结果在相同提取次数下，膨化品采用单次分别提取10，20，30 min的提取方法，生品采用单次提取2 h的提取方法，实验中浸提的人参皂苷量之间无显著性差异(P>0.05)。结论红参膨化炮制后，可显著缩短提取时间，提高其浸提效率。
       【关键词】  红参; 膨化炮制; 人参皂苷
       红参性温，味甘而微苦，气浓香，具有大补元气、回阳固脱功效。阳气不足、冬季畏寒、四肢寒冷、肺虚咳嗽、脾虚久泻久痢、老人早衰、妇女内分泌紊乱者宜选用之[1]。红参含多种成分，主要活性成分为人参皂苷。红参质地致密、坚硬，因此有效成分不易浸提。为此，笔者运用单螺杆挤压膨化机对红参进行膨化处理，继而采用乙醇回流法提取人参皂苷，对红参膨化前后人参皂苷进行了含量比较[2～4]。现报道如下。
       1 材料
       1.1 炮制品及制备红参生品，购自成都市荷花池中药材批发市场，经王盛民鉴定为五加科人参属植物Panax ginseng C.A.Mey.的干燥根;红参膨化品，取红参，将其切片，粉碎，过1号筛(8～10目)，启动单螺杆挤压膨化机，用大米预热，有成型的膨化大米出来后，改用红参，除去大米-红参交接的膨化部分，收集红参膨化饮片，备用。
       1.2 仪器PH-42单螺杆挤压膨化机;旋转蒸发器RE-52，上海亚荣生化仪器厂;DK-S26型电热恒温水浴锅;KQ-100型超声波清洗器;日本岛津LC-20AHPLC仪;电子分析天平(德国，赛多利斯sartorius，型号：BS224S)。
       1.3 试剂高效液相使用甲醇(色谱纯，天津科密欧化学试剂公司)，乙腈(色谱纯，美国Fisher公司)，水为超纯水;其他所用试剂均为分析纯。
       1.4 对照品为中国药品生物制品检定所提供(人参皂苷Rg1，批号110703-200424，供含量测定用;人参皂苷Re，批号110754-200421，供含量测定用)。
       2 方法与结果
       2.1 形态比较见图1～2及表1。图1 生品形态 图2 膨化品形态表1 红参膨化前后性状特征
       2.2 提取工艺(乙醇回流法)将红参生品和膨化品粉碎，过40目筛，分别取10.0 g，加8倍量70%乙醇，水浴回流提取，温度为85℃，合并提取液，回收乙醇，用10倍量蒸馏水溶解，用少量蒸馏水洗涤蒸馏瓶，再用乙醚脱脂2次(60，30 ml)，合并到分液漏斗中，用水饱和正丁醇萃取3次(60，40，30 ml)，合并正丁醇萃取液。加入约1/2量的蒸馏水减压浓缩至干，残渣用甲醇溶解，定容至5 ml，作为供试品溶液，待用[5，6]。膨化前后提取时间及次数见表2。表2 红参膨化前后提取时间及提取次数
       2.3 TLC鉴别取人参皂苷标准品，称量人参皂苷Rg15.03 mg，人参皂苷Re5.00 mg，用甲醇溶解，分别定容到5 ml容量瓶中，作为标准品溶液。分别吸取提取次数为3次的4个供试品溶液，并与标准品溶液点于同一硅胶G薄层板上，以氯仿∶正丁醇∶甲醇∶水(13∶10∶10∶8)10℃以下放置的下层溶液为展开剂，展开，取出，晾干，喷以10%硫酸乙醇溶液，在105℃加热至斑点显色清晰[7]。结果见图3。1.Rg1 2.Re 3.2h×3次(生品)4.10min×3次 5.20min×3次 6.30min×3次图3 红参TLC图谱
       2.4 人参皂苷的含量测定
       2.4.1 色谱条件色谱柱为Hypersil ODS柱，规格4.0 mm×200 mm，类型C18 5 μm，大连中汇达科学仪器公司;流动相为乙腈-0.05%磷酸(体积比19.7∶80.3);柱温30℃;检测波长203 nm;流速1.0 ml∕min。
       2.4.2 标准曲线精密称取人参皂苷Rg1对照品7.90 mg，人参皂苷Re对照品5.90 mg，置5 ml容量瓶中，加甲醇使溶解，并稀释至刻度，摇匀，待用(每毫升混合液含人参皂苷Rg11.58 mg∕ml，人参皂苷Re1.18 mg/ml)。精密吸取混合对照品溶液1.0，2.0，4.0，6.0，8.0，10.0 ml注入液相色谱仪进行测定，测得各峰面积结果见图4。以人参皂苷Rg1对照品溶液的浓度(mg/ml)为横坐标，峰面积为纵坐标，得回归方程为Y=3.359 3×106X-90 780，r=0.999 9;以人参皂苷Re对照品溶液的浓度(mg/ml)为横坐标，峰面积为纵坐标，得回归方程为Y=3.321 4×106X-65 982，r=0.9999。表明人参皂苷Rg1在0.158～1.580 mg/ml范围内线性关系良好;人参皂苷Re在0.118～1.180 mg/ml范围内线性良好。
       2.4.3 供试品溶液分别吸取“2.2”提取工艺中的供试品溶液各1 ml，加甲醇定容至5 ml，经0.45 μm微孔滤膜过滤，取续滤液作为人参皂苷含量测定用的供试品溶液。
       2.4.4 含量测定 取“2.4.3”项下供试品溶液，进行含量测定。测定结果见表3及图5～6。表3 红参皂苷含量测定结果
       2.5 结果分析 预实验结果表明，红参在乙醇回流提取条件下，采用2 h×3次提取法，可取得较好的提取效果。在此基础上，本实验拟采取对红参膨化品提取10 min×3次，20 min×3次，30 min×3次，并对其中每次的实验结果进行了含量测定。运用spss11.5统计软件，对所得的数据进行单因素完全随机设计的方差分析。结果表明：① 在提取次数相同的情况下，膨化品采用单次分别提取10，20，30 min的提取方法，生品单次提取2h的提取方法，实验中浸提的人参皂苷量之间(指人参皂苷Rg1和Re的总量)无显著性差异(P>0.05)。② 在提取次数相同的情况下，人参皂苷Rg1的提取量间无显著性差异(P>0.05);人参皂苷Re提取量之间亦无显著性差异(P>0.05)。③ 在单次提取时间相同的情况下，提取1次所得的人参皂苷量与3次比较，具有显著性差异(P< 0.05);其中提取1次所得的人参皂苷Rg1，Re含量分别和3次比较，亦均具有显著性差异(P<0.05)。图4 对照品图谱图5 生品图谱图6 膨化品图谱
       3 讨论
       膨化过程是中药在膨化机中受到挤压、剪切、摩擦等作用，当中药从膨化机内通过出料口的环型间隙时，高温、高压突然释放，水分闪蒸，热量挥发，中药被膨化成多孔疏松的产品。因此中药经膨化处理后，细胞壁破碎，有效成分更易溶解和释放出来，显著缩短了提取时间。
       由于膨化过程是瞬间的高温高压，因此对中药的有效成分影响较小。在红参的膨化实验中，我们可以看出膨化炮制对人参皂苷Rg1，Re均无影响。
       红参质地坚硬，直接采用煎煮法、温浸法、乙醇回流法提取人参皂苷都较费时，而且煎煮法温度较高，煎煮时间过长，对有效成分破坏较大[8]。而红参膨化炮制后，比表面积增加，孔隙率增大，不需煎煮，用热水浸泡即可服用，简单易行，且携带亦方便。
       【参考文献】
         　　[1] 刘 郁，刘连新.人参功效再认识[J].时珍国医国药，2006，17(2):289.
       
       [2] 国家药典委员会.中国药典，Ⅰ部[S].北京：化学工业出版社，2000.
       
       [3] 周立艳，梁生旺，冯素香，等.优肝宁胶囊中人参皂苷Rg1、Re的含量测定[J].广东药学院学报，2006，22(2):146.
       
       [4] 曹泰山，王 丹.人参皂苷Rg1与人参皂苷Re含量测定方法的研究[J].时珍国医国药，2005，16(8):739.
       
       [5] 张 玲，单卫华，梁瑞雪，等.人参提取工艺研究[J].时珍国医国药，2000，11(9):777.
       
       [6] 张 晶，陈全成，弓晓杰,等.不同提取方法对人参皂苷提取率的影响[J].吉林农业大学学报，2003，25(1):71.
       
       [7] 周 漩，冯毅凡，郭晓玲.主成分分析法用于人参皂苷薄层色谱分离的研究[J].广东药学院学报，2003，19(2):101.
       
       [8] 张崇禧，郑友兰，张春红，等.不同方法提取人参总皂苷工艺的优化研究[J].人参研究，2003，10(4):5.