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脂多糖体外刺激小鼠腹腔巨噬细胞TLR
作者:宋美芳,金沈锐*,曾 南,沈映君    
作者单位:(成都中医药大学药学院,四川 成都 611137)

《时珍国医国药》 2010年 第3期

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       【摘要】 
       目的探讨时间和剂量对脂多糖(LPS)刺激小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4mRNA表达的影响。方法常规提取和培养小鼠腹腔巨噬细胞。时效实验,加入终浓度为1 μg/ml LPS,分别刺激1,3,6,12 h后取材;量效实验,分别加入终浓度为0.00,0.01,0.1,1,10 μg/ml LPS, 3 h后取材。小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA的表达采用RT-PCR进行。结果①在LPS 1μg/ml 剂量下6 h内,随着时间的延长,TLR2/4mRNA的表达量逐渐上升,与空白对照组相比有显著性差异(P<0.05,P<0.01);但刺激时间达12 h时,细胞开始脱壁、死亡。② 在LPS 0.01~1 μg/ml 剂量范围内,随着LPS浓度的增加,TLR2/4mRNA的表达量逐渐上升,呈一定剂量依赖关系,与空白对照组相比有显著性差异,(P<0.05或P<0.01);但当LPS浓度达10 μg/ml,TLR2/4 mRNA的表达量反而下降。结论用LPS体外刺激小鼠腹腔巨噬细胞,在0.01~1 μg/ml浓度范围内,在1~6 h时间内,其TLR2/4 mRNA的表达呈现出一定的时效与量效关系,该研究可为今后的研究者提供有益的时间和剂量参考。
       【关键词】  脂多糖; 腹腔巨噬细胞; Toll样受体2/4; 基因表达
       Effect of LPS on the Expressions of TLR2/4 mRNA in Mouse Peritoneal Macrophage in vitro
       SONG Meifang,JIN Shenrui*,ZENG Nan,SHEN Yingjun
       (Chengdu University of TCM, Chengdu, 611137, China)
       Abstract:ObjectiveTo study the effect of LPS on the expression of mRNA of TLR2/4 of mouse peritoneal macrophage in vitro. MethodsMouse peritoneal macrophage were extracted and cultivated by routine, LPS(1 μg/ml) was used to stimulate peritoneal macrophage in vitro,then the expression TLR2/4 of mRNA were detected by RT-PCR at 1,3,6,12 h respectively. At the same time,LPS(0.001,0.01,0.1,1,10 μg/ml) was used to stimulate peritoneal macrophage in vitro,and the expressions were detected at 3 h point. Results①The expression of TLR2/4 mRNA in peritoneal macrophage was increased within 6 hs at the dosage of 1 μg/ml (P <0.01 or P<0.05),but the expression was decreased at 12 h point; Within the dosage of 0.01~1 μg/ml,the expression of TLR2/4 mRNA in peritoneal macrophage was increased at 3-hour point(P<0.01;P<0.05),but the expression decreased at the dosage of 10 μg/ml.ConclusionExpression of TLR2/4 mRNA in mouse peritoneal macrophage with LPS is correlated with time and dosage in vitro. Time is from 1 to 6 h, and dosage is from 0.01μg/ml to 1 μg/ml.
       Key words: Lipopolysaccharide; Peritoneal macrophage; Toll-like receptors 2/4; Gene expression
       脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)可以激活巨噬细胞,促进其产生与释放许多活性物质,导致炎症反应的发生[1,2]。Toll样受体(Toll-like receptor,TLR)[3]是近几年发现的一类天然免疫受体,有10种TLR家族成员,其中与LPS信号传导相关的主要是TLR2和TLR4。现有文献提示,小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA的表达随LPS刺激浓度及时间而变化,但目前的资料存在一定的模糊和矛盾,本研究希望通过实验探讨LPS体外诱导小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4mRNA表达的时间与剂量关系。现报道如下。
       1 材料与仪器
       1.1 动物昆明小鼠,雄性,体质量18~22 g,由成都中医药大学实验动物中心提供。动物合格证号:SCXK(川)2008311。
       1.2 试剂LPS(Sigma公司),RPMI Medium 1640(Invitrogen Corporation),Fetal Bovine Serum(Invitrogen Corporation),RT试剂盒(Fermentas),PCR试剂(广州东盛生物科技有限公司),琼脂糖(ShanghaiYito Bio-instrument Co.),Trizol(Invitrogen),三氯甲烷、异丙醇、无水乙醇(分析纯,成都市科龙化工试剂厂)。
       1.3 仪器 S.SW-CJ-1F净化工作台(上海跃进医疗器械厂),MCO-15AC型CO2培养箱(SANYO Electric Biomedical Co.Ltd),倒置相差显微镜(Leica),TGL-16G-A型低温高速离心机(上海安亭科学仪器厂),LDZ5-2低速自动平衡离心机(北京医用离心机厂),DYY-11B型三恒电泳仪(北京市六一仪器厂),MDF-U50V超低温冰箱(SANYO Electric Biomedical Co.Ltd),PCR仪(BIO-RAD),PCR凝胶成像系统(BIO-RAD),5030-PVL压力蒸气灭菌器(长春百奥生物仪器责任有限公司)。
       2 方法
       2.1 小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养[4,5]小鼠脱颈处死,浸入75%酒精中5 min后,于腹中线处剪开皮肤,暴露腹壁肌肉,用酒精消毒腹膜壁,将无血清1640培养液5 ml注入小鼠腹腔,仰卧平放并轻揉小鼠腹部2~3 min,静置5 min后,使小鼠体倾向一侧,用注射器抽取腹腔液约4~4.5ml,1 500 r/min离心5 min,去上清,用含10%小牛血清的1640培养液进行细胞计数,调整细胞浓度为1×106个/ml(取出一滴细胞悬液经台盼蓝染色,细胞存活率大于99%),5 ml/瓶接种于25 cm2的培养瓶中,置于37℃,5%CO2培养箱中培养,3 h后更换培养液除去未贴壁细胞,贴壁细胞则为腹腔巨噬细胞。
       2.2 实验分组
       2.2.1 LPS诱导小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的时间效应研究小鼠腹腔巨噬细胞培养24 h后,细胞分为空白对照组(加入等量培养液)、LPS刺激组(终浓度为1 μg/ml),分别在1,3,6,12 h终止培养,弃去培养液,用PBS洗涤细胞后加入Trizol试剂,提取总RNA后进行RT-PCR检测细胞TLR2/4mRNA表达。
       2.2.2 LPS对小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的剂量效应研究小鼠腹腔巨噬细胞培养24 h后,细胞分为空白对照组(加入等量培养液)、LPS刺激组(终浓度分别为0.001,0.01,0.1,1,10 μg/ml,等比设立),3 h后终止培养,弃去培养液,用PBS洗涤细胞后加入Trizol试剂,提取总RNA后进行RT-PCR实验。
       2.3 采用RT-PCR方法检测细胞TLR2/4mRNA表达 用Trizol试剂提取细胞总RNA,按RT试剂盒说明书逆转录并进行PCR扩增。以小鼠β-actin作为内参。引物序列如下:β-actin(288 bp)Forward 5"-GCTACAGCTTCACCACCACAG-3"Reverse 5"-GGTCTTTACGGATGTCAACGTC-3" TLR2(295 bp) Forward 5"-TTTGCTCCTGCGAACTCCTA-3"Reverse 5"-GCTTTCTTGGGCTTCCTCTT-3"TLR4(349 bp) Forward 5"-GGGTCAAGGAACAGAAGCA-3"Reverse 5"-TGAAGGCAGAGGTGAAAGC-3"
       PCR反应条件:94℃预变性5 min;94℃ 30 s,60℃ 30 s,72℃ 30 s,30个循环;72℃延伸10 min。扩增产物在1%琼脂糖凝胶上90 V电压下电泳30 min,凝胶成像系统拍照并分析光密度值,并计算mRNA相对表达量,公式如下:
       mRNA相对表达量=目的基因条带光密度值/对应的β-actin条带光密度值。
       2.4 统计学方法 用《中国医学百科全书·医学统计学》统计软件包PEMS3.1进行。
       3 结果
       3.1 LPS诱导小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的时间效应实验结果如表1,图1所示。未受LPS刺激的腹腔巨噬细胞有少量的TLR2、TLR4 mRNA表达。当LPS刺激1 h后,TLR4 mRNA表达明显高于对照组(P<0.05);刺激达3~6 h,TLR2、TLR4 mRNA的表达明显高于对照组,并维持在一个高水平(P<0.01);但12 h后,细胞开始脱壁、死亡,细胞总RNA未能成功提取。表1 LPS诱导小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的时间效应与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01;n=3
       3.2 LPS对小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的剂量效应实验结果见表2,图2~3。未受LPS刺激时仅有少量TLR2、TLR4 mRNA表达;随浓度的增加,TLR2、TLR4 mRNA表达显著上升,在LPS浓度为0.01 μg/ml时,与对照组相比显著差异(P<0.05);在LPS浓度为1 μg/ml时,两者表达达到峰值,与对照组相比显著差异(P<0.01);但当LPS浓度上升为10 μg/ml时,TLR2、TLR4 mRNA表达则出现下降。1~4分别代表空白、LPS 1 h、LPS 3 h、表2 LPS对小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4mRNA表达
       4 讨论
       来源于革兰氏阴性菌细胞壁的LPS被用于炎症的研究已有几十年的历史。从大量文献中可发现LPS更多的是被用于炎症模型而非天然免疫模型。LPS可以诱发细胞因子如TNF-α、IL-1β或IL-6所致的许多炎症作用,且比单一的细胞因子更能引起强烈的反应。Toll样受体(TLR)广泛表达在天然免疫系统,它们通过识别保守的病原体相关分子位点(PAMPs),例如细菌的脂多糖、脂肽,或者细菌和病毒的DNA、RNA等,来识别大量的异己抗原[6]。与LPS作用有关的TLR主要是TLR2和TLR4。TLR2虽不是识别LPS的主要受体,但其可能作为“二级受体”促进炎症反应的发生。TLR4是被研究较多的与LPS信号转导有关的受体[7]。小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA的表达随LPS刺激时间和浓度的不同而变化,呈现一定时间、剂量依赖关系,但目前的研究资料存在一定的差异[8~10],给进一步的研究带来一定的困难。因此,本研究根据相关文献进行了LPS体外诱导小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达的时效与量效关系,希望为其他研究人员提供一定的参考。
       实验结果显示,LPS在1 μg/ml剂量下随着刺激时间的延长,小鼠腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA的表达显著上升,且在3,6h时,TLR2/4 mRNA表达达峰值且维持在一个高水平(P<0.01),但12h时,巨噬细胞变圆开始脱壁、死亡。同时,剂量也对TLR2/4 mRNA表达存在明显的影响,浓度为0.01 μg/ml时腹腔巨噬细胞TLR2/4 mRNA表达明显(P<0.05);浓度为1 μg/ml时,表达达到峰值(P<0.01);但当LPS浓度上升为10 μg/ml时,TLR2、TLR4 mRNA表达反而出现下降。这样的结果与目前的一些文献存在一定差异,提醒后来的研究者加以注意。
       本研究结果表明,用LPS体外刺激小鼠腹腔巨噬细胞,在0.01~1 μg/ml浓度范围内,在1~6 h时间内,其TLR2/4 mRNA的表达呈现出一定的时效与量效关系,可为今后的研究者提供有益参考。
       【参考文献】
          [1] Jane A Mitchell, Mark J Paul-Clark. Critical role of toll-like receptors and nucleotide oligomerisation domain in the regulation of health and disease[J].journa of Endocrinology,2007,193,323.
       
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       [3] Arancibia S A,Behrdn C J,Aguirre I M ,et al.Toll-like receptors are key participants in innate immune responses[J].Biol Res,2007,40(2):97.
       
       [4] 尹美珍,李世普,袁 琳,等. 小鼠腹腔巨噬细胞的分离培养与鉴定[J].武汉大学学报,2006,27(2):203.
       
       [5] 张 华,王 莹,阮洪生,等. 小鼠腹腔巨噬细胞的分离培养与吞噬功能测定[J].黑龙江医药科学, 2007,30(5):10.
       
       [6] 孙 午,熊 莺,傅颖媛,等. Toll样受体的研究进展[J].实验与检验医学,2008,26(4):413.
       
       [7] 董 宁,姚咏明. Toll样受体免疫学研究新进展[J].感染、炎症、修复,2008,9(3):177.
       
       [8] 郭 菲,汪 泱,方 方,等. 脂多糖刺激后腹腔巨噬细胞表面Toll样受体表达的变化[J].江西医学检验,2004,22(6):483.
       
       [9] 郭 菲,汪 泱,王共先,等. 内毒素/脂多糖对小鼠腹腔巨噬细胞膜Toll样受体2及4表达的影响[J].中华烧伤杂志,2005,21(5):380.
       
       [10] 郭 菲,汪 泱,王共先,等.LPS刺激后小鼠巨噬细胞Toll样受体(TLR)4及肿瘤坏死因子α表达的变化[J].实验与检验医学,2008,26(2):105.

经典中医古籍

中药学教材(附图片)

穴位数据库(附图片)